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          雙熒光素酶實(shí)驗(yàn)的注意事項(xiàng)有哪些?

          更新時(shí)間:2024-01-09點(diǎn)擊次數(shù):1932

          雙螢光素酶報(bào)告基因通常以螢火蟲(chóng)螢光素酶為報(bào)告基因,以海腎螢光素酶為內(nèi)參基因,如此所構(gòu)成的報(bào)告系統(tǒng)有檢測(cè)靈敏度高、動(dòng)態(tài)范圍廣、內(nèi)參平衡等優(yōu)勢(shì),因此在實(shí)驗(yàn)中得到廣泛應(yīng)用。那么你知道雙熒光素酶實(shí)驗(yàn)的注意事項(xiàng)有哪些嗎?讓我們一起來(lái)看看吧!

          一、熒光值過(guò)高

          熒光值過(guò)高可能會(huì)超出儀器檢測(cè)范圍,從而檢測(cè)不到值,一般讀數(shù)在5-6位之間較好。熒光值過(guò)高可通過(guò)以下方式嘗試解決:

          1.減少質(zhì)粒轉(zhuǎn)染量;

          2.細(xì)胞樣品裂解后,離心取上清后檢測(cè)或?qū)α呀猱a(chǎn)物進(jìn)行稀釋后檢測(cè)。

          (注:不建議通過(guò)減少底物量來(lái)降低熒光值,需要保證底物的飽和來(lái)反映熒光素酶真實(shí)的表達(dá)水平,否則會(huì)造成檢測(cè)結(jié)果出現(xiàn)大的偏差。)

          二、熒光值過(guò)低或無(wú)熒光值

          1. 啟動(dòng)子活性低

          a.優(yōu)化細(xì)胞的培養(yǎng)條件,提高熒光素酶的表達(dá)量;

          b.更換強(qiáng)啟動(dòng)子(如SV40、CMV)。

          2. 轉(zhuǎn)染效率低

          a.優(yōu)化轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)條件,用較易轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒做陽(yáng)性對(duì)照(如轉(zhuǎn)染過(guò)表達(dá)熒光蛋白質(zhì)粒);

          b.確保轉(zhuǎn)染DNA的質(zhì)量,可通過(guò)酶切或瓊脂糖凝膠電泳的方法對(duì)DNA質(zhì)量進(jìn)行鑒定;

          c.選擇活性較高,處于指數(shù)分裂期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。

          3. 樣品裂解效率低

          a.細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),12-36h內(nèi)最好,長(zhǎng)時(shí)間培養(yǎng)后,細(xì)胞可能會(huì)難裂解;

          b.加入的裂解液需足量,保證細(xì)胞能夠充分裂解。

          4. 熒光信號(hào)衰減

          熒光素酶的半衰期一般約30min,加完底物后可立即檢測(cè),盡量在30min內(nèi)完成。

          5. 底物氧化失效

          a.底物避光密封保存,螢火蟲(chóng)熒光素酶底物-20℃保存;海腎熒光素酶底物推薦-80℃保存;

          b. 反應(yīng)工作液建議現(xiàn)用現(xiàn)配。

          三、如何判斷轉(zhuǎn)染成功

          1. 如轉(zhuǎn)入的miRNA帶熒光標(biāo)記如GFP,則可直接在轉(zhuǎn)染后、細(xì)胞裂解前,顯微鏡下觀察細(xì)胞熒光;

          2. 如轉(zhuǎn)入的miRNA不帶任何熒光標(biāo)記,可考慮進(jìn)行miRNA的qRT-PCR檢測(cè),通過(guò)檢測(cè)結(jié)果判斷實(shí)驗(yàn)組2、4、6是否相對(duì)其對(duì)照組miRNA有顯著過(guò)表達(dá);

          3.設(shè)置一個(gè)熒光質(zhì)粒轉(zhuǎn)染參照組,同批轉(zhuǎn)染一個(gè)組的細(xì)胞,間接反映出同批次實(shí)驗(yàn)的轉(zhuǎn)染情況。

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